ВСЕ О КРЕМНИИ
Об эффективности кремния для защиты от бактерий и профилактики онкологии знали еще в СССР
Но почему об этом не говорят сейчас?
Мы решили выяснить о кремнии всё!
ЖИВОЕ В НЕЖИВОМ
1985 год СССР
Документальный фильм о кремнии
1985 год, СССР
- Воронков М.Г.член-корреспондент академии наук СССР
- Григалинович Г.А.доктор медицинских наук
- Лукевиц Э. Я.доктор химических наук
а в 20 веке доказана немецкими и советскими учеными
ткань, хрящи и связки
Полезные свойства кремния, доказанные научными исследованиями
1. Укрепляет кости
Исследования показывают, что у людей, в рационе которых больше кремния, минеральная плотность костей выше, что снижает вероятность развития остеопороза. Однако у пожилых женщин в постменопаузальный период дополнительный кремний не оказывает существенного влияния на замедление разрушения костей.
2. Поддерживает здоровье и красоту кожи
Кремний способствует улучшению упругости и прочности кожи, замедляя процессы старения. Он помогает восстановить здоровое сияние кожи и предотвращает появление морщин за счет усиленной выработки коллагена.
3. Предотвращает ломкость ногтей
Этот минерал важен для поддержания прочности ногтей, предотвращает их ломкость и защищает от инфекций. Кремний также способствует поступлению необходимых питательных веществ в ногтевое ложе.
4. Предотвращает атеросклероз
Добавки с кремнием снижают вероятность образования атеросклеротических бляшек в сосудах, что уменьшает риск уплотнения артерий и возникновения сердечных приступов и инсультов. Кроме того, кремний способствует правильному использованию кальция в организме, предотвращая его накопление в артериях, таких как аорта.
5. Восстанавливает слизистую оболочку
Минерал активно участвует в защите и восстановлении слизистых оболочек организма, особенно дыхательных путей, что особенно важно при обезвоживании. Кремний в основном сосредоточен в соединительных тканях, где помогает восстанавливать структуру клеток.
6. Помогает при болезни Альцгеймера
Считается, что избыточное накопление алюминия в организме может способствовать развитию болезни Альцгеймера, а кремний помогает выводить этот металл. Это важно, так как алюминий часто встречается в окружающей среде, продуктах питания и косметике.
7. Вымывает токсины и способствует очищению организма
Силикагель эффективно помогает выводить из организма вредные вещества, такие как токсины и тяжелые металлы, что делает его полезным в программах детоксикации. Для максимального эффекта рекомендуется сочетать прием кремния с правильным питанием и витаминными добавками.
Видео о пользе кремния
За рубежом пользой кремния для организма заинтересовались совсем недавно
Как распознать дефицит кремния в вашем организме?
С дефицитом кремния чаще всего сталкиваются женщины в возрасте, кремний влияет на синтез эластина и коллагена, поддерживает состояние нервной системы, влияет на снижение уровня общего холестерина, поэтому симтомами недостатка кремния являются:
- Ломкость ногтей и волос (в том числе облысение)
- Угревая сыпь
- Усталость, плохая память и головные боли
- Патологии соединительной ткани (бронхо-легочной системы, связок, хрящей);
- Патологии костной ткани (остеопороз, переломы, размягчение зубной эмали);
- Холестеринемия, раннее развитие атеросклероза.
Получить кремний можно из разных источников, однако в зависимости от формы частиц эффект от него будет разный
в форме наночастиц?
Исходя из результатов предварительного анализа научных источников - именно такая форма кремния имеет 100% усвояемость. Подробнее с продуктом можно ознакомиться на официальном сайте производителя.
Пожалуйста, поделитесь этой информацией с близкими
Статьи и источники
https://cyberleninka.ru/article/n/kremniy-si-znachenie-dlya-organizma-i-zdorovya-20-luchshih-istochnikov
Минерал помогает избавляться от избытка алюминия в организме. Следует также учитывать, что его биодоступность снижается при употреблении большого количества кальция, магния. Ученые предполагают, что они конкурируют за один и тот же путь абсорбции, либо образуют нерастворимые соединения, которые снижают его усвоение. Есть также предположения, что диоксид кремния контролирует метаболизм кальция и магния.
Кремний в медицине: где и для чего используется
Два основных применения материалов на основе диоксида кремния в медицине и биотехнологии — восстановление костей и системы доставки лекарств. Принимают добавки с микроэлементом по двум причинам:
- с возрастом уровень содержания в организме значительно снижается, и дефицит приводит к дегенеративным заболеваниям ЖКТ
- овес, ячмень, пшеница, просо, картофель и другие продукты содержат достаточное количество кремния, но они очищаются до такой степени, что теряют большую часть полезного соединения.
Имейте в виду, что при приеме БАДов важна дозировка. Перед использованием желательно проконсультироваться с диетологом, нутрициологом, а не следовать слепо рекомендациям на этикетке.
Научные исследования, посвященные пользе кремния
- Более высокие количества алюминия обнаруживаются в пораженных участках головного мозга у пациентов, страдающих болезнью Альцгеймера. Кремний, связываясь с алюминием, предотвращает всасывание последнего в ЖКТ и уменьшает его негативное воздействие на организм.
- Кремний помогает восстанавливать и поддерживать ткани пищеварительного тракта. Как показали исследования, в гладкой мускулатуре кишечника вырабатывается коллаген. Фибриллярный белок участвует в построении новых мышечных клеток для заживления слизистой оболочки желудка, стенок кишечника. Это предотвращает большинство проблем с ЖКТ, которые развиваются из-за деградации слизистой оболочки. Кремний также поглощает большое количество токсинов, замедляющих работу пищеварительной системы, обращает вспять пищевую непереносимость, уменьшает метеоризм.
- Ученые исследовали потребление минерала с пищей и выяснили, что оно снижается с возрастом. Среднее потребление кремния мужчинами составило 30–33 мг/день и 24–25 мг/день женщинами. Основными источниками кремния у мужчин были пиво и бананы, у женщин — бананы, стручковая фасоль.
- Растворимая ортокремниевая кислота может иметь важное значение для роста, развития костей и соединительной ткани. Вещество содержится в больших количествах в пиве. Его содержание было оценено в 76 различных сортах пива, но существенной разницы не было обнаружено. В пиве кремний присутствует в основном в мономерной форме, биодоступен.
- Ученые подтверждают роль кремнезема в формировании костей. В исследовании участвовало 136 женщин, которые принимали добавки с кальцием, витамином D, диоксидом кремния. Через 12 месяцев комбинированная терапия оказала благоприятное влияние на костный коллаген по сравнению с приемом только кальция и витамина D. Это говорит о том, что кремнезем в сочетании с кальцием и витамином D потенциально полезен при остеопорозе. Его также можно принимать при переломах костей для ускорения их восстановления.
- Исследование 2005 года подтвердило, что кремнезем помогает восстанавливаться женской коже, поврежденной солнцем, и замедляет старение. У женщин, участвовавших в эксперименте, текстура кожных покровов улучшилась после ежедневного приема 10 мг кремнезема. Положительное действие вещества легко объяснить — выработка коллагена уменьшается с возрастом, а кремнезем является ключом к созданию коллагена. Коллаген сохраняет упругость, эластичность и уменьшает появление тонких линий и морщин.
1. Ищенко А.А., Фетисов Г.В., Асланов Л.А. Нанокремний: свойства, получение,
применение, методы исследования и контроля. Физматлит. – 2011.
2. Каливраджиян Э.С., Крючков М.А., Чиркова Н.В., Гордеева Т.А. Влияние
нанокремния на физико-механические свойства цинк-фосфатного цемента. //
Системный анализ и управление в биомедицинских системах. - 2011. - Т.10. - №1. -
С. 126-128.
3. Каливраджиян Э.С., Чиркова Н.В., Рыжова И.П., Примачева Н.В. Результаты
исследования биосовместимости стоматологических материалов,
модифицированных наночастицами кремния и серебра. // Научные ведомости
Белгородского государственного университета. Серия: Медицина. Фармация. -
2012. - Т.17. - №4-1. - С. 269-275.
4. Кирошка В.В., Самченко И.И., Надутов В.М., Перекос А.Е., Войнаш В.З.,
Бондаренко Т.П. Взаимодействие наночастиц магнетита с культурой альвеолярных
макрофагов при разных концентрациях белка. // Наука и инновации. - 2011. - Т.7. -
№6. - С. 44-49.
5. Колбин И.А., Колесников О.Л. Изменение показателей функциональной активности
нейтрофильных гранулоцитов периферической крови доноров после инкубации с наночастицами диоксида кремния. // Вестник Южно-Уральского гос. Университета.
- 2011. - №20. - С. 116-119.
6. Колесниченко А.В., Тимофеев М.А., Протопопова М.В. Токсичность
наноматериалов – 15 лет исследований. // Российские нанотехнологии. - 2008. - Т. 3.
- №3-4. - С. 54-61.
7. Ксенофонтова О.И., Васин А.В., Егоров В.В., Бобыль А.В., Солдатенков Ф.Ю.,
Теруков Е.И., Улин В.П., Улин Н.В., Киселев О.И. Пористый кремний и его
применение в биологии и медицине. // Журнал технической физики. - 2014. - Т. 84, -
№1. - С. 67-78.
8. Мешалкин Ю.П., Бгатова Н.П. Перспективы и проблемы использования
неорганических наночастиц в онкологии. // Journal of Siberian Federal University. -
2008. - Vol. 3. - P. 248–268
9. Нолтинг Б. Новейшие методы исследования биосистем. Техносфера, Москва.
Перевод с английского Хромова-Борисова Н.Н. – 2005.
10. Олейников В.А., Суханова А.В., Набиев И.Р. Флуоресцентные полупроводниковые
нанокристаллы в биологии и медицине. // Российские нанотехнологии. - 2007. - Т.2.
- №1-2. - С. 162-173.
Осминкина Л.А., Гонгальский М.Б., Тимошенко В.Ю., Кудрявцев А.А. Кремниевые НЧ как эффективные соносенсибилизаторы для лечения опухолей. // Онкохирургия.
– 2010. - Т.3. - №1. - С. 34-36.
12. Осминкина Л.А., Лукьянова Е.Н., Гонгальский М.Б., Кудрявцев А.А., Гайдарова А.Х., Полтавцева Р.А., Тимошенко В.Ю., Кашкаров П.К., Сухих Г.Т. Влияние наноструктурированного кремния на процессы пролиферации стволовых и раковых
клеток. // Бюллетень экспериментальной биологии. – 2011. - Т.151. - №1. - С.91-95
13. Петрова Е.А., Дражина Н.П., Семенова Е.М., Воробьева С.А. Применение магнитных наночастиц для маркирования мезенхимальных стволовых клеток. // Вестник БГУ. - 2012. - №3. - С. 54-59.
14. Подколодная О.А., Игнатьева Е.В., Подколодный Н.Л., Колчанов Н.А. Пути поступления наночастиц в организм млекопитающих, их биосовместимость и клеточные эффекты
// Успехи современной биологии. - 2012. - Т.132. - №1. - С. 3-15
15. Терещенко В.П., Картель Н.Т. Медико-биологические эффекты наночастиц: реалии и прогнозы. Монография. Киев. Наукова думка. - 2010.
16. Ткачук В.А., Тюрин-Кузьмин П.А, Белоусов В.В., Воротников А.В. Пероксид водорода как новый вторичный посредник. // Биологические мембраны. - 2012. -
Т.29. - №1-2. - С. 21-37.
17. Филатова Е.Н., Уткин О.В. Культуры клеток в моделировании инфекционных
процессов. // Успехи современной биологии. - 2014. - №1. - С. 19-25.
18. Фрешни Р. Культура животных клеток. - Москва. Бином. Лаборатория знаний. 2010.
С. 406.
19. Фролов Ю.Г. Курс коллоидной химии: Поверхностные явления и дисперсионные
системы. Москва. - Химия. - 1989. С. 464.
20. Хайдуков С.В., Зурочка А.В. Вопросы современной проточной цитометрии.
Клиническое применение. Челябинск. - Челябинская государственная медицинская
академия Росздрава. . – 2008.- С. 7.
21. Чеканов А.В., Баранова О.А., Левин А.Д. Исследование влияния наночастиц золота
на активацию полиморфно-ядерных лейкоцитов крови человека. // Биофизика. -
2013. - Т. 58. - №3. - С. 495-500.
22. Янушева Е.В., Мирошников С.В., Кван О.В. Оценка влияния наночастиц металлов
на морфологические показатели периферической крови животных. // Вестник ОГУ.
- 2013. - № 12. - P. 203–207.
23. Adili A., Crowe S., Beaux M., Cantrell T., Shapiro P.J., Mcllroy D. N., Gustin K. E.
Differential cytotoxicity exhibited by silica nanowires and nanoparticles. // Nanotoxicol. -
2008. - Vol 2. - № 1. - P.1-8.
24. Aggarwal P., Hall J.B., McLeland C.B., Dobrovolskaia M.A., McNeil S.E. Nanoparticle
interaction with plasma proteins as it relates to particle biodistribution, biocompatibility
and therapeutic efficacy. // Adv. Drug Deliv. Rev. - 2009. - Vol. 61. - № 6. - P. 428–437.
25. Ahamed M. Silica nanoparticles-induced cytotoxicity, oxidative stress and apoptosis in
cultured A431 and A549 cells. // Hum. Exp. Toxicol. - 2013. - Vol. 32. - № 2. - P. 186–195.
26. Ahamed M., Alsalhi M.S., Siddiqui M.K.J. Silver nanoparticle applications and human
health. // Clin. Chim. Acta.- 2010. - Vol. 411. - № 23-24. - P. 1841–1848.
27. Akerman M.E., Chan W.C.W.,Laakkonen P., Bhatia S.N., Ruoslahti E. Nanocrystal
targeting in vivo. // PNAS. - 2002. - Vol. 99. - № 20. - P. 12617–12621.
28. Allouni Z.E., Hol P.J., Cauqui M.A., Gjerdet N.R., Cimpan M.R. Role of physicochemical
characteristics in the uptake of TiO2 nanoparticles by fibroblasts. // Toxicol. In Vitro.
Elsevier Ltd. - 2012. - Vol. 26. - № 3. - P. 469–479.
29. Anderson S.H.C., Elliott H., Wallis D.J., Canham L.T., Powell J.J. Dissolution of different
forms of partially porous silicon wafers under simulated physiological conditions // Phys.
Status Solidi. - 2003. - Vol. 197. - № 2. - P. 331–335.
30. Arvizo R.R., Miranda O.R., Thompson M.A., Pabelic C.M., Bhattacharya R., Robertson J.
D., Rotello V.M., Prakash Y.S., Mukherjee P. Effect of nanoparticle surface charge at the
plasma membrane and beyond. // Nano Lett. - 2010. - Vol. 10. - №7. - P. 2543-2548.
31. Asharani P.V, Hande M.P., Valiyaveettil S. Anti-proliferative activity of silver
nanoparticles. // BMC Cell Biol. - 2009. - Vol. 10. - P. 65.
32. Avalos A., Haza A.I., Mateo D., Morales P. Interactions of manufactured silver
nanoparticles of different sizes with normal human dermal fibroblasts. // Int. Wound J. - 2014. - P. 1–9.
33. Ballou B., Ernst L.A., Andreko S., Harper T., Fitzpatrick J.A.J. Sentinel lymph node
imaging using quantum dots in mouse tumor models. // Bioconjug. Chem. - 2007. - Vol. 18. - № 2. - P. 389–396.
34. Baltazar G.C., Guha S., Lu W., Lim J., Boesze-Battaglia K., Laties A. M., Tuagi P.,
Kompella U.B., Mitchell C.H. Acidic nanoparticles are trafficked to lysosomes and restore an acidic lysosomal pH and degradative function to compromised ARPE-19 cells.
// PLoS One. - 2012. - Vol. 7. - № 12. - P. 1-10.
35. Betty Y. S., Kim M.D., James T., Rutka M.D., W.C.W. Chan. Nanomedicine. // The new
England journal of medicine. - 2010. - Vol. 363. - № 25. - P. 2434-2443.
36. Bhatia S.K., Yetter A.B. Correlation of visual in vitro cytotoxicity ratings of biomaterials
with quantitative in vitro cell viability measurements. // Cell Biol. Toxicol. - 2008. - Vol. - № 4. - P. 315–319.
37. Bhattacharjee S. Hann L.HJ., Evers N.M., Jiang X., Marcelis A.TM., Zuilhof H., Rietjens
I.MCM., Alink G.M. Role of surface charge and oxidative stress in cytotoxicity of organic
monolayer-coated silicon nanoparticles towards macrophage NR8383 cells. // Part. Fibre
Toxicol. - 2010. - Vol. 7. - № 25. - P. 1-12.
38. Bogunia-Kubik K., Sugisaka M. From molecular biology to nanotechnology and
nanomedicine // Biosystems. - 2002. - Vol. 65. - № 2-3. - P. 123–138.
39. Braydich-Stolle L., Hussain S., Schlager J.J., Hofman M-C. In vitro cytotoxicity of
nanoparticles in mammalian germline stem cells. // Toxicol. Sci. - 2005. - Vol. 88. - № 2.
- P. 412–419.
40. Brayner R. The toxicological impact of nanoparticles. // Nanotoday. - 2008. - Vol. 3. - №
1-2. - P. 48–55.
41. Bröker L.E., Kruyt F.A.E., Giaccone G. Cell death independent of caspases: a review. //
Clin. Cancer Res. - 2005. - Vol. 11. - № 9. - P. 3155–3162.
42. Brown D.I., Griending K.K. Nox proteins in signal transduction. // Free Radic. Biol. Med.
- 2009. - Vol.47. - P. 1239-1253.
43. Brunk U.T., Neuzil J., Eaton J.W. Lysosomal involvement in apoptosis.// Redox Rep. -
2001. - Vol.6. - P.91-97.
44. Burdon R.H., Gill V. Cellularly Generated Active Oxygen Species and Hela Cell
Proliferation // Free Radic. Res. - 1993. - Vol. 19. - № 3. - P. 203–213.
45. Cai X, Cai J, Dong S, Deng H, Hu M. Morphology and mechanical properties of normal
lymphocyte and Jurkat revealed by atomic force microscopy. // Sheng Wu Gong Cheng
Xue Bao. - 2009. - Vol.25. - №7. - P. 1107–1112.
46. Caporossi D., Ciafre S.A., Pittaluga M., Savini I., Farace M.G. Cellular responses to
H2O2 and bleomycin-induced oxidative stress in L6C5 rat myoblasts // Free Radic. Biol.
Med. - 2003. - Vol. 35. - № 11. - P. 1355–1364.
47. Chan W.C. Quantum Dot Bioconjugates for Ultrasensitive Nonisotopic Detection //
Science. - 1998. - Vol. 281. - P. 2016–2018.
48. Chithrani B.D., Chan W.C.W. Elucidating the mechanism of cellular uptake and removal
of protein-coated gold nanoparticles of different sizes and shapes. // Nano Lett. - 2007. -
Vol. 7. - № 6. - P. 1542–1550.
49. Choi J., Zhang Q., Reipa V., Wang N.S., Stratmeyer M.E., Hitchins V.M., Goering P.L.
Comparison of cytotoxic and inflammatory responses of photoluminescent silicon
nanoparticles with silicon micron-sized particles in RAW 264.7 macrophages. // J. Appl.
Toxicol. - 2009. - Vol. 29. - P. 52–60.
50. Choi J., Zneng Q., Katz H.E., Guilarte T.R. Silica-based nanoparticle uptake and cellular
response by primary microglia. // Environ. Health Perspect. - 2010. - Vol. 118. - № 5. - P.
589–595.
51. Chu P., Mills D. Laser-Induced Forces in Metallic Nanosystems: The Role of Plasmon
Resonances // Phys. Rev. Lett. - 2007. - Vol. 99. - № 12. - P. 127401 (1-4).
52. Collinsworth A.M.Y.M., Zhang S., Kraus W.E., Truskey G.A. Apparent elastic modulus
and hysteresis of skeletal muscle cells throughout differentiation. // Am J Physiol Cell
Physiol. - 2002. - Vol. 283. - P. 1219–1227.
53. Costa K.D., Sim A.J., Yin F.C.-P. Non-Hertzian approach to analyzing mechanical
properties of endothelial cells probed by atomic force microscopy. // J. Biomech. Eng. -
2006. - Vol. 128. - № 2. - P. 176–184.
54. Crane M., Handy R.D., Garrod J., Owen R. Ecotoxicity test methods and environmental
hazard assessment for engineered nanoparticles. // Ecotoxicology. - 2008. - Vol. 17. - P. 421–437.
55. Betty Y. S., Kim M.D., James T., Rutka M.D., W.C.W. Chan. Nanomedicine. // The new
England journal of medicine. - 2010. - Vol. 363. - № 25. - P. 2434-2443.
56. Bhatia S.K., Yetter A.B. Correlation of visual in vitro cytotoxicity ratings of biomaterials with quantitative in vitro cell viability measurements. // Cell Biol. Toxicol. - 2008. - Vol. 24. - № 4. - P. 315–319.
57. Bhattacharjee S. Hann L.HJ., Evers N.M., Jiang X., Marcelis A.TM., Zuilhof H., Rietjens I.MCM., Alink G.M. Role of surface charge and oxidative stress in cytotoxicity of organic
monolayer-coated silicon nanoparticles towards macrophage NR8383 cells. // Part. Fibre Toxicol. - 2010. - Vol. 7. - № 25. - P. 1-12.
58. Bogunia-Kubik K., Sugisaka M. From molecular biology to nanotechnology and
nanomedicine // Biosystems. - 2002. - Vol. 65. - № 2-3. - P. 123–138.
59. Braydich-Stolle L., Hussain S., Schlager J.J., Hofman M-C. In vitro cytotoxicity of
nanoparticles in mammalian germline stem cells. // Toxicol. Sci. - 2005. - Vol. 88. - № 2. - P. 412–419.
60. Brayner R. The toxicological impact of nanoparticles. // Nanotoday. - 2008. - Vol. 3. - № 1-2. - P. 48–55.
61. Bröker L.E., Kruyt F.A.E., Giaccone G. Cell death independent of caspases: a review. //
Clin. Cancer Res. - 2005. - Vol. 11. - № 9. - P. 3155–3162.
62. Brown D.I., Griending K.K. Nox proteins in signal transduction. // Free Radic. Biol. Med.
- 2009. - Vol.47. - P. 1239-1253.
63. Brunk U.T., Neuzil J., Eaton J.W. Lysosomal involvement in apoptosis.// Redox Rep. -
2001. - Vol.6. - P.91-97.
64. Burdon R.H., Gill V.
Cellularly Generated Active Oxygen Species and Hela Cell
Proliferation // Free Radic. Res. - 1993. - Vol. 19. - № 3. - P. 203–213.
65. Cai X, Cai J, Dong S, Deng H, Hu M. Morphology and mechanical properties of normal
lymphocyte and Jurkat revealed by atomic force microscopy. // Sheng Wu Gong Cheng
Xue Bao. - 2009. - Vol.25. - №7. - P. 1107–1112.
66. Caporossi D., Ciafre S.A., Pittaluga M., Savini I., Farace M.G. Cellular responses to
H2O2 and bleomycin-induced oxidative stress in L6C5 rat myoblasts // Free Radic. Biol. Med. - 2003. - Vol. 35. - № 11. - P. 1355–1364.
67. Chan W.C. Quantum Dot Bioconjugates for Ultrasensitive Nonisotopic Detection //
Science. - 1998. - Vol. 281. - P. 2016–2018.
68. Chithrani B.D., Chan W.C.W. Elucidating the mechanism of cellular uptake and removal of protein-coated gold nanoparticles of different sizes and shapes. // Nano Lett. - 2007. -
Vol. 7. - № 6. - P. 1542–1550.
69. Choi J., Zhang Q., Reipa V., Wang N.S., Stratmeyer M.E., Hitchins V.M., Goering P.L. Comparison of cytotoxic and inflammatory responses of photoluminescent silicon
nanoparticles with silicon micron-sized particles in RAW 264.7 macrophages. // J. Appl. Toxicol. - 2009. - Vol. 29. - P. 52–60.
70. Choi J., Zneng Q., Katz H.E., Guilarte T.R. Silica-based nanoparticle uptake and cellular response by primary microglia. // Environ. Health Perspect. - 2010. - Vol. 118. - № 5. - P. 589–595.
71. Chu P., Mills D. Laser-Induced Forces in Metallic Nanosystems: The Role of Plasmon Resonances // Phys. Rev. Lett. - 2007. - Vol. 99. - № 12. - P. 127401 (1-4).
72. Collinsworth A.M.Y.M., Zhang S., Kraus W.E., Truskey G.A. Apparent elastic modulus and hysteresis of skeletal muscle cells throughout differentiation. // Am J Physiol Cell
Physiol. - 2002. - Vol. 283. - P. 1219–1227.
73. Costa K.D., Sim A.J., Yin F.C.-P. Non-Hertzian approach to analyzing mechanical properties of endothelial cells probed by atomic force microscopy. // J. Biomech. Eng. - 2006. - Vol. 128. - № 2. - P. 176–184.
74. Crane M., Handy R.D., Garrod J., Owen R. Ecotoxicity test methods and environmental
hazard assessment for engineered nanoparticles. // Ecotoxicology. - 2008. - Vol. 17. - P. 421–437.
75. Davis M.E., Zuckerman J.E., Choi C.H.J., Selegson D., Tolcher A., Alabi C.A., Yen Y., Heidel J.D., Ribas A. Evidence of RNAi in humans from systemically administered
siRNA via targeted nanoparticles. // Nature. - 2010. - Vol. 464. - P. 1067–1070.
76. Demir E., Burgucu D., Turna F., Aksakal S., Kaya B. Determination of TiO2, ZrO2, and Al2O3 nanoparticles on genotoxic responses in human peripheral blood lymphocytes and cultured embyronic kidney cells. // J. Toxicol. Environ. Health. A. - 2013. - Vol. 76. - №
16. - P. 990–1002.
77. Derfus A.M., Chan W.C.W., Bhatia S.N. Probing the Cytotoxicity of Semiconductor
Quantum Dots. // Nano Letters. - 2004. - Vol.4. - №1. - P.11-18.
78. Dobrovolskaia M.A., Aggarwal P., Hall J.B., McNeil S.E. Preclinical Studies To
Understand Nanoparticle Interaction with the Immune System and Its Potential Effects on
Nanoparticle Biodistribution. // Molecular pharmaceutics. -2008. - Vol. 5. № 4. - P. 487–495.
79. Docheva D., Padula D., Popov C., Mutschler W., Clausen-Schaumann H., Schieker M. Researching into the cellular shape, volume and elasticity of mesenchymal stem cells, osteoblasts and osteosarcoma cells by atomic force microscopy. // J. Cell. Mol. Med. -
2008. - Vol. 12. - № 2. - P. 537–552.
80. Donaldson K., Aitken R., Tran L., Stone V., Duffin R., Forrest G., Alexander A. Carbon nanotubes: a review of their properties in relation to pulmonary toxicology and workplace
safety. // Toxicol. Sci. - 2006. - Vol. 92. - № 1. - P. 5–22.
81. Duan H., Nie S. Cell-penetrating quantum dots based on multivalent and endosomedisrupting surface coatings. // J Am Chem Soc. - 2007. - Vol.129. - №11. - P.3333-3338.
82. Ehrenberg M.S., Eriedman A.E., Finkelstein J.N., Oberdorster G., McGrath J.L. The influence of protein adsorption on nanoparticle association with cultured endothelial cells. // Biomaterials. - 2009. - Vol. 30. - P. 603–610.
83. Ekkapongpisit M., Giovia A., Follo C., Caputo G., Lsidoro C. Biocompatibility,
endocytosis, and intracellular trafficking of mesoporous silica and polystyrene
nanoparticles in ovarian cancer cells : effects of size and surface charge groups. // International Journal of Nanomedicine. - 2012. - Vol 7. - P. 4147–4158.
84. Fabrega J., Luoma S.N., Tyler C.R., Galloway T.S., Lead J.R. Silver nanoparticles:
behaviour and effects in the aquatic environment. // Environ. Int. - 2011. - Vol. 37. - P.
85. Fang C., Shi B., Pei Y.Y. Hong M.H., Wu J., Chen H.Z. In vitro tumor targeting of tumor necrosis factor-alpha-loaded stealth nanoparticles: effect of MePEG molecular weight and
particle size. // Eur J Pharm Sci. - 2006. - Vol.27. - №1. - P.27-36.
86. Fede C., Selvestrel F., Compagnin C., Mognato M., Mancin F., Reddi E., Celotti L. The toxicity outcome of silica nanoparticles (Ludox®) is influenced by testing techniques and
treatment modalities. // Anal. Bioanal. Chem. - 2012. - Vol. 404. - P. 1789–1802.
87. Florez L., Herrmann C., Cramer J.M., Hauser C.P., Koynov K., Landfester K., Crespy D.,
Mailander V. How shape influences uptake: interactions of anisotropic polymer
nanoparticles and human mesenchymal stem cells. // Small. - 2012. - Vol. 8. - № 14. - P. 2222–2230.
88. Foley S., Crowley C., Smaihi M., Bonfils C., Erlanger B. F., Seta P., Larroque C. Cellular localisation of a water-soluble fullerene derivative. // Biochem. Biophys. Res. Commun. - 2002. - Vol. 294. - P. 116–119.
89. Freitas R.A. What is nanomedicine? // Nanomedicine. - 2005. - Vol. 1. - № 1. - P. 2–9.
90. Fubini B., Hubbard A. Reactive oxygen species (ROS) and reactive nitrogen species (RNS) generation by silica in inflammation and fibrosis // Free Radic. Biol. Med. - 2003. - Vol. 34. - № 12. - P. 1507–1516.
91. Fujioka K., Hiruoka M., Sato K., Manabe N., Miyasaka R., Hanada S., Hoshino A., Tilley
R. D., Manome Y., Hirakuri K., Yamamoto K. Luminescent passive-oxidized silicon
quantum dots as biological staining labels and their cytotoxicity effects at high
concentration. // Nanotechnology. - 2008. - Vol. 19. - P. 1-7.
92. Fujioka K., Hanada S., Kanaya F., Hoshino A., Sato K., Yokosuka S., Takigami Y., Hirakuri K., Shiohara A., Tilley R. D., Manabe N., Yamamoto K., Manome Y. Toxicity
test: Fluorescent silicon nanoparticles // J. Phys. Conf. Ser. - 2011. - Vol. 304. - P. 1-5.
93. Giaretti W., Nusse M. Light scatter of isolated cell nuclei as a parameter discriminating
the cell-cycle subcompartments. // Metods Cell Biol. - 1994. - Vol. 41. - P. 389-400.
94. Girotti A.W. Lipid hydroperoxide generation, turnover, and effector action in biological
systems. // Journal of Lipid Resear